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Experimento revelou estratégia promissora para o controle populacional de Frankliniella occidentalis (tripes). Por meio da entrega oral de RNA de fita dupla (dsRNA) capaz de silenciar o gene da enzima trealose-6-fosfato sintase (TPS), o inseto sofreu drástica redução de fecundidade e aumento de mortalidade, com impacto populacional de 97% em apenas 100 dias.
Frankliniella occidentalis ataca culturas de campo e de estufa, danificando tecidos vegetais e transmitindo vírus fitopatogênicos. Desde os anos 1960, espalhou-se de forma acelerada por ao menos 57 países. A resistência a inseticidas e a eliminação de predadores naturais têm dificultado seu controle.
O estudo avaliou o potencial da interferência por RNA (RNAi) como alternativa. O alvo foi o gene TPS, essencial para a produção de trealose, um açúcar vital para o metabolismo, desenvolvimento e reprodução dos insetos. Ao ingerirem o dsRNA sintetizado em laboratório ou produzido por bactérias modificadas (Escherichia coli), os tripes apresentaram forte queda na expressão da enzima.
Os efeitos foram observados em diferentes fases do ciclo de vida. Nos primeiros três dias após o consumo de dsRNA, a mortalidade das ninfas aumentou até 5,5 vezes em comparação ao grupo controle. Adultos sobreviveram por menos tempo e colocaram menos ovos. A duração do período pré-reprodutivo foi estendida. A expectativa de vida foi reduzida de 52,7 para 29,9 dias. A fecundidade caiu de 209 para 54 ovos por fêmea.
As análises usaram tabelas de vida por estágio e simulações de crescimento populacional. Em 100 dias, a população que ingeriu bactérias com dsTPS alcançou 166 mil indivíduos — frente a 5,7 milhões nos grupos controle. Um declínio de 1 para 34. A taxa intrínseca de crescimento e a taxa líquida de reprodução também caíram substancialmente.
Esse resultado é comparável à eficácia de inseticidas comerciais. Além disso, como a via metabólica da trealose não ocorre em vertebrados, o método apresenta elevada especificidade e baixo risco ambiental.
A técnica utilizou duas abordagens: aplicação direta do dsRNA em brotos de feijão e uso de E. coli modificadas para expressar o gene-alvo. O segundo método mostrou-se mais eficaz a longo prazo, mesmo com a degradação parcial do RNA por enzimas intestinais do inseto.
Mais informações em doi.org/10.3390/insects16060614
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