Os besouros carabídeos (Coleoptera: Carabidae) caracterizam-se como
insetos predadores associados ao solo e se destacam como agentes controladores
de pragas agrícolas. Constituem uma das maiores famílias de insetos, contendo
aproximadamente 39 mil espécies em todo o mundo. Devido a essa grande riqueza
de espécies, ocorrência mundial, papel benéfico na agricultura e beleza
estética, os carabídeos são uma das famílias de insetos mais estudadas. Os
adultos apresentam coloração escura ou cor metálica brilhante e tamanho
variando de 0,7mm a 66mm (https://bugguide.net/node/view/186). Apesar de
possuírem asas, raramente voam e muitas espécies são completamente incapazes de
voar. Boa parte dos carabídeos é mais ativa à noite, podendo ser difícil
observá-los. Podem ser encontrados durante o dia removendo-se na cobertura do
solo como pedras, cascas de árvores e folhas secas.

Os carabídeos têm o ciclo de vida dividido em quatro estágios: ovo,
larva, pupa e adulto. Os estágios de ovo, larva e pupa habitam principalmente o
subsolo, enquanto os adultos movimentam-se pela superfície do solo, existindo
espécies que podem se mover na parte superior das plantas à procura de presas.
Muitas espécies de carabídeos apresentam hábito polífago (alimentam-se de
vários tipos de presas) como pulgões, ovos, larvas e pupas de moscas,
borboletas, mariposas, besouros, lesmas e caracóis. Os carabídeos também
consomem nematoides, que são organismos presentes nos solos de todo o
território nacional, e atacam as raízes das plantas, limitando a produtividade
agrícola. Na Europa e América do Norte, carabídeos são considerados os mais
importantes invertebrados predadores de sementes de daninhas, podendo reduzir a
ocorrência dessas plantas em culturas agrícolas, sendo uma grande esperança
para o enorme desafio de reduzir a aplicação de herbicidas na agricultura.

Carabídeos
como agentes de controle
biológico

Os carabídeos têm elevado potencial como besouros predadores de pragas,
podendo reduzir significativamente as populações de pragas associadas com
hortaliças, frutíferas e culturas anuais. Esses predadores são abundantes em
áreas de hortaliças, tendo sido observados em alface, batata, batata-doce,
cenoura, couve, repolho e tomate. Também foram registrados em pomares de
citros, maçã, maracujá, mirtilo e pera. Com relação às pragas de frutíferas, os
carabídeos desempenham relevante papel no controle de populações da
mosca-das-frutas Ceratitis capitata (Wiedemann) (Diptera: Tephritidae),
importante praga de citros e de outras frutíferas no Brasil, sendo úteis para o
planejamento de estratégias de controle biológico conservativo para controlar C.
capitata em pomares cítricos. Na cultura do morango, os carabídeos foram
associados como predadores do pulgão-verde Chaetosiphon fragaefolii (Cockerell)
(Hemiptera: Aphidiae), considerado um dos principais insetos-praga do
morangueiro no Brasil, Chile e Argentina. Um aspecto positivo é o fato de as
hortaliças encontrarem-se entre as plantas com a maior parte das informações
disponíveis sobre carabídeos predadores de lesmas. A espécie Calosoma
granulatum (Perty) é considerada um importante carabídeo predador de larvas
e pupas de Anticarsia gemmatalis (Hübner) e Alabama argillacea (Hübner)
(Lepidoptera: Erebidae), que são pragas que causam sérios prejuízos à
agricultura brasileira.

A atividade e o número de carabídeos presentes nas culturas podem ser
influenciados pela temperatura e umidade do ambiente, tipo de solo, umidade do
solo e tipo de cultura. Em compensação, os fragmentos florestais, cercas vivas,
quebra-ventos e plantas herbáceas (ervas) situadas nas proximidades das áreas
cultivadas servem de abrigo para os carabídeos, durante períodos do ano
desfavoráveis à sobrevivência desses besouros.&nbsp;


Algumas técnicas podem ser empregadas para aumentar as populações de
carabídeos nas culturas, como a conservação de fragmentos florestais e a
introdução de áreas não agrícolas como cercas vivas, bancos de besouros (beetle
banks), além da semeadura de gramíneas e/ou plantas floríferas nas margens
da lavoura. A presença de plantas daninhas espontâneas no entorno da cultura
pode atuar como abrigo, favorecendo a conservação e o aumento populacional de
carabídeos. Todas essas práticas estão associadas ao controle biológico
conservativo, que se caracteriza pelo manejo ambiental com o objetivo de
fornecer áreas de vegetação adjacente à lavoura para aumentar a eficiência de
agentes de controle de pragas como carabídeos e outros organismos benéficos.
Isso se deve ao fato de os carabídeos apresentarem comportamento cíclico de
permanecer em áreas não agrícolas durante o período de entressafra, para
posteriormente colonizarem o interior da lavoura, com o consequente aumento do
controle biológico natural das pragas. Deste modo, a presença de fragmentos
florestais e de áreas não agrícolas é essencial para conservar e aumentar a
ocorrência de carabídeos e outros inimigos naturais.

Apesar do enorme potencial de carabídeos controlarem pragas, são poucas
as informações existentes no Brasil sobre a distribuição, a ecologia e o
consumo de presas por espécies desses predadores em agroecossistemas. Também,
praticamente não existem estudos para as condições do Brasil e mesmo da América
Latina indicando espécies de carabídeos consumidoras de sementes de plantas
daninhas e a identificação das espécies dessas plantas. Devido ao potencial
como agentes de controle de pragas, os carabídeos presentes em agroecossistemas
do Hemisfério Norte têm sido mais estudados que outros grupos de artrópodes
predadores. Deve ser ressaltado que a diversidade de carabídeos é elevada nas
condições brasileiras, fator fundamental para o sucesso do aproveitamento
desses besouros no controle biológico de pragas. Portanto, essa grande
diversidade de espécies de carabídeos é um fator que encoraja o desenvolvimento
de pesquisas desses besouros predadores no Brasil.

Pesquisas com financiamento da Fundação de Apoio à Pesquisa do Estado de
São Paulo (Fapesp) e do Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e
Tecnológico (CNPq) avaliaram a abundância, a distribuição e a capacidade de
consumo de lagartas de A. gemmatalis por carabídeos capturados em cinco
agroecossistemas formados por fragmento florestal, culturas de soja/milho e
pomar de laranja no estado de São Paulo. Nessas áreas foram encontradas 71
espécies de carabídeos, dentre as quais destacaram-se como as mais importantes Abaris
basistriata Chaudoir, Calosoma granulatum Perty, Tetracha brasiliensis
(Kirby), Odontocheila nodicornis (Dejean) e espécies dos gêneros Selenophorus,
Scarites e Galerita. Pela abundância que ocorrem nos agroecossistemas,
as espécies de carabídeos citadas servem de base para a avaliação da eficiência
de estratégias de controle biológico conservativo.

Ressalta-se que o gênero Selenophorus é reconhecido por conter
espécies consumidoras de sementes de plantas daninhas.

Outro estudo mostrou que plantas herbáceas (Lobularia marítima
(L.), Tagetes erecta L., Fagopyrum esculentum Moench. e plantas
daninhas), adjacentes a cultivo de algodão colorido, favoreceram a ocorrência
de espécies de carabídeos, dentre as quais destacaram-se Selenophorus
discopunctatus Dejean, Selenophorus alternans Dejean, Galerita brasiliensis
Dejean, A. basistriata e Scarites sp.

No Quadro 1 encontram-se publicações com informações sobre assuntos
mencionados no texto e para a América Latina.

Capazes de reduzir pragas como pulgões, moscas, borboletas, mariposas, besouros, lesmas, caracóis e até mesmo nematoides, os besouros carabídeos têm grande potencial para uso no controle biológico conservativo em hortaliças e frutas.

Os besouros carabídeos (Coleoptera: Carabidae) caracterizam-se como insetos predadores associados ao solo e se destacam como agentes controladores de pragas agrícolas. Constituem uma das maiores famílias de insetos, contendo aproximadamente 39 mil espécies em todo o mundo. Devido a essa grande riqueza de espécies, ocorrência mundial, papel benéfico na agricultura e beleza estética, os carabídeos são uma das famílias de insetos mais estudadas. Os adultos apresentam coloração escura ou cor metálica brilhante e tamanho variando de 0,7mm a 66mm (https://bugguide.net/node/view/186). Apesar de possuírem asas, raramente voam e muitas espécies são completamente incapazes de voar. Boa parte dos carabídeos é mais ativa à noite, podendo ser difícil observá-los. Podem ser encontrados durante o dia removendo-se na cobertura do solo como pedras, cascas de árvores e folhas secas.

Conheça os besouros carabídeos

A ocorrência de doenças
pode causar sérios prejuízos à cultura da videira, afetando diretamente a
produtividade, a estética dos frutos e a qualidade do produto industrializado.
Dentre elas, o míldio, causado por Plasmopara viticola, é considerado
uma das mais frequentes e destrutivas que afetam a videira no Brasil, com
potencial de reduzir a produção em até 75%. Originário da América do Norte, P.
viticola provocou grandes prejuízos em Vitis vinifera, quando foi
introduzido na Europa em 1875. No Brasil foi relatado pela primeira vez em
1891, em videiras cultivadas no Instituto Agronômico de Campinas (IAC), São
Paulo. O míldio ainda tem a sua história associada à descoberta acidental, pelo
botânico francês Pierre Marie Alexis Millardet em 1885, da calda bordalesa, o primeiro
produto químico utilizado para o controle de doenças. Originalmente utilizada
para evitar a coleta furtiva das uvas, notou-se que, onde era aplicada a calda
bordalesa, as plantas apresentavam-se menos debilitadas pelo míldio.

P. viticola ataca todos os órgãos verdes e tenros da planta,
tais como ramos, brotos, flores, bagas e principalmente as folhas, onde
observa-se inicialmente a presença de manchas pálidas, angulares e úmidas, que
vistas contra a luz apresentam um aspecto oleoso típico. Posteriormente, essas
manchas apresentam um crescimento pulverulento, denso, de cor branca e aspecto
cotonoso, composto por estruturas reprodutivas do patógeno, na face inferior da
folha. Com o desenvolvimento da doença, as áreas afetadas necrosam e as manchas
tornam-se castanho-avermelhadas. Em condições favoráveis os ataques podem ser
intensos, provocando a desfolha generalizada das plantas, a deformação dos
ramos e a seca e queda de flores. Quando o míldio ataca as flores e os frutos
ainda no estádio de chumbinho, as bagas ficam recobertas por um pó branco
constituído de frutificações do patógeno e acabam secando. A ocorrência de
desfolhas por anos sucessivos acaba por enfraquecer a planta e comprometer a
sua produção nas safras seguintes por impedir a formação de reservas para os
próximos ciclos.

O oomiceto P.
viticola, pertencente ao Reino Chromista, é um parasita obrigatório, isto
é, sobrevive apenas quando associado a hospedeiros do gênero Vitis.
Apresenta micélio cenocítico (hifas sem septos), que cresce intercelularmente e
retira os nutrientes dos quais necessita para sobreviver a partir das células
do hospedeiro através de estruturas denominadas haustórios. Quando no ambiente
a umidade relativa está entre 95% e 100%, com pelo menos quatro horas de escuro
e temperatura entre 18ºC e 22°C, inicia-se a formação de esporangióforos, a
partir dos quais originam-se esporângios ovalados e hialinos (reprodução
assexuada). A quantidade de esporângios produzidos é alta, podendo chegar,
segundo alguns autores, a aproximadamente 300 mil por cm² de área lesionada.

A disseminação dos
esporângios é realizada pelos ventos ou por respingos de água de chuva ou de
irrigação. Ao atingir a superfície do tecido, inicia-se o processo de formação
dos zoósporos no interior dos esporângios. Cada esporângio pode formar de um a
dez zoósporos, biflagelados lateralmente que, após serem liberados do
esporângio, movimentam-se até localizar o estômato e encistam. Em seguida, há a
formação de um tubo germinativo que penetra no hospedeiro, iniciando o processo
de infecção do tecido. A presença de água livre sobre folhas e frutos é o
principal fator para desencadear a formação dos zoósporos, a sua liberação e o
início das infecções. Temperaturas abaixo de 5ºC e acima de 30°C inibem o
processo infeccioso mesmo com a presença de água livre.

A reprodução sexual de P.
viticola ocorre no interior dos tecidos afetados da videira através da
fusão de expansões terminais das hifas denominadas anterídio e oogônio, que
resulta em uma estrutura diploide denominada oósporo, de formato arredondado,
coloração amarelada, parede espessa e diâmetro variando de 16,28µm a 49,15µm.
Relatos da formação de oósporos nas condições brasileiras de cultivo são
recentes. Apenas em 2021 foi confirmada a presença deles em cultivos na região
serrana de Santa Catarina. Estes concentravam-se na região central das lesões
de míldio, próximos às nervuras das folhas. A reprodução sexual contribui para
a maximização da diversidade genética de P. viticola, aumentando a
probabilidade de quebra de resistência de cultivares e de perda de eficácia de
fungicidas antioomicetos. A liberação dos oósporos ocorre após a decomposição
dos tecidos. Na primavera eles germinam em condições de umidade elevada e
formam, no final do tubo germinativo, um esporângio piriforme com capacidade de
produzir entre 30 zoósporos e 56 zoósporos, que serão responsáveis pelas
primeiras infecções. O principal mecanismo de sobrevivência do patógeno a
condições adversas é por meio destes oósporos presentes no interior de tecidos de
folhas velhas que permanecem sobre o solo e micélios dormentes em gemas.

A forma de condução
baixa dos vinhedos, com vegetação densa e irrigação, é fator favorável ao
aparecimento da doença, pois proporciona um microclima ideal para o
desenvolvimento do patógeno. 

Devido à importância da
doença, o manejo do míldio deve começar pela escolha do local mais adequado
para realizar o plantio. De preferência instalar o vinhedo em áreas bem
ensolaradas voltadas para o Norte, livres do acúmulo de umidade, encharcamento
do solo, neblinas, fontes de água etc. 

Em relação ao sistema de
condução, estudos têm demonstrado que o sistema de condução tipo espaldeira
resulta em valores inferiores de incidência e severidade de míldio em
comparação a outros sistemas de condução, como o tipo manjedoura, que propiciam
maior adensamento do dossel vegetativo e, portanto, menor insolação e aeração
da folhagem.

Medidas que para reduzir
o tempo de molhamento da parte aérea das plantas como espaçamento adequado, poda
verde (desbrota, desnetamento, desfolha, desponte etc.) e boa disposição
espacial dos ramos sobre o aramado também devem ser adotadas.

As irrigações devem ser
equilibradas de forma a evitar acúmulo de umidade nas folhas e solo. O sistema
de irrigação localizada pode contribuir para reduzir a incidência e severidade
da doença.

Quando possível optar
por cultivares com algum nível de resistência. De modo geral, as cultivares
americanas e seus híbridos são menos suscetíveis que as europeias. Estudo
realizado em 2017 por Costa et al., permitiu separar as cultivares
testadas quanto à resistência, sendo possível agrupá-las nas categorias
resistentes (Romana, Moscatel de Hamburgo, Isabel e Niágara Rosada) e
suscetíveis (Rosalinda, Itália, Patrícia, Kyoho, RedGlobe, Roberta e Rubi).
Entre as cultivares consideradas tolerantes destacam-se principalmente BRS
Isis, BRS Núbia, BRS Vitória, BRS Melodia, Concord, Concord 30, Regent e
Bronner.

Utilizar adubações
equilibradas. Tecidos tenros são mais suscetíveis a doenças. Pesquisas já
demonstraram que são o excesso de nitrogênio e as carências de potássio e
cálcio os principais fatores que levam as plantas à menor resistência a três
das principais doenças da videira: míldio, podridão cinzenta e oídio.

Fazer uso do tratamento de inverno com calda sulfocálcica.
Eliminar e destruir restos de cultura e de podas. Em cultivos protegidos
favorecer a circulação de ar no interior das estufas. Pesquisas já demonstraram
que o cultivo de videira em estufas proporciona, entre outros benefícios, a
diminuição da ocorrência de míldio, uma vez que não há o molhamento foliar
causado pelas chuvas, fundamental para o desenvolvimento de epidemias.

Utilizar preventivamente
fungicidas registrados como calda bordalesa, oxicloreto de cobre, hidróxido de
cobre, clorotalonil, captana, folpete, ditianon, mancozebe, sulfato de cobre +
cal virgem (calda bordalesa), manebe, metalaxil, benalaxil, cimoxanil,
famoxadona, fenamidona, piraclostrobina, azoxistrobina, dimetomorfe,
ciazofamida e fluopicolide, sempre de acordo com as orientações do fabricante.

Aplicação preventiva de
fosfitos com os objetivos de estimular o crescimento das plantas e promover a
produção de fitoalexinas (compostos antimicrobianos capazes de inibir a
infecção). Também é recomendada a utilização de sistemas de previsão de míldio.
Baseados em variáveis climáticas, tem por objetivo racionalizar a aplicação de
fungicidas, limitando-as às épocas mais propícias para a ocorrência da doença.
A Epagri de Santa Catarina, por exemplo, oferece aos produtores dos estados do
Sul a plataforma Agroconnect, um sistema de previsão on-line. Segundo o site
encontra-se ainda em fase de testes.

O cultivo da
videira (Vitis spp. L.) é um legado da humanidade que integra hábitos, culturas
e tradições de tempos imemoriais. Um dos relatos mais antigos sobre o cultivo
da videira é citado na Bíblia, no livro do Gênesis, onde Noé planta uma vinha
no monte Ararat, logo após o dilúvio. Recentemente, em 2017, arqueólogos
relataram a descoberta, no Sul do Cáucaso, de restos de cerâmicas que datam
aproximadamente de 6.000 a.C., que certamente pertenceram a vinicultores que já
produziam vinhos em grande escala nessa época.

No Brasil, a
videira foi introduzida em 1532, na Capitania de São Vicente, por Martin Afonso
de Souza, com variedade de Vitis vinifera trazida da Ilha da Madeira.
Atualmente é cultivada nas regiões Sul, Sudeste e Nordeste, com a produção
nacional atendendo principalmente ao consumo in natura tanto para o mercado
interno como para exportação, além da indústria de vinhos, sucos, refrigerantes,
geleias etc. A região Sul é a maior produtora de uvas, com 58,91% da produção
nacional, sendo o estado do Rio Grande do Sul o maior produtor, com uma
produção de 822.689 toneladas, com destaque para os municípios de Flores da
Cunha, Bento Gonçalves e Caxias do Sul. O Nordeste é a segunda maior região
produtora no País, contribuindo com 31,52% da produção nacional. Concentrada no
Vale do São Francisco, a produção de uvas de Pernambuco em 2017 foi de 423.382
toneladas, com destaque para o município de Petrolina (PE), que conta com uma
produção de 333.750 toneladas. A região Sudeste é a terceira região produtora,
com destaque para o estado de São Paulo, que apresenta uma área cultivada de
8.022ha e uma produção de 147.359 toneladas. A produção paulista se destaca
principalmente na produção de uvas de mesa, sendo considerada o maior produtor
brasileiro da cultivar Niágara Rosada.

Causador do míldio, Plasmopara vitícola é responsável por uma das mais frequentes e destrutivas doenças que afetam a videira. Ataque inclui todos os órgãos verdes e tenros da planta como ramos, brotos, flores, bagas e folhas. Manejo exige atenção e integração de estratégias.

A ocorrência de doenças pode causar sérios prejuízos à cultura da videira, afetando diretamente a produtividade, a estética dos frutos e a qualidade do produto industrializado. Dentre elas, o míldio, causado por Plasmopara viticola, é considerado uma das mais frequentes e destrutivas que afetam a videira no Brasil, com potencial de reduzir a produção em até 75%. Originário da América do Norte, P. viticola provocou grandes prejuízos em Vitis vinifera, quando foi introduzido na Europa em 1875. No Brasil foi relatado pela primeira vez em 1891, em videiras cultivadas no Instituto Agronômico de Campinas (IAC), São Paulo. O míldio ainda tem a sua história associada à descoberta acidental, pelo botânico francês Pierre Marie Alexis Millardet em 1885, da calda bordalesa, o primeiro produto químico utilizado para o controle de doenças. Originalmente utilizada para evitar a coleta furtiva das uvas, notou-se que, onde era aplicada a calda bordalesa, as plantas apresentavam-se menos debilitadas pelo míldio.

Controle do míldio na videira

A alface (Lactuca sativa L.) é a hortaliça
folhosa mais consumida no Brasil e no mundo, e seu cultivo está sujeito à
ocorrência de diversas doenças, que podem comprometer a sua produtividade.
Dentre as doenças causadas por fungos que afetam a cultura destacam-se a
septoriose (Septoria lactucae), o míldio (Bremia lactucae), a
queima da saia (Rhizoctonia solani), a mancha de Cercospora (Cercospora
longissima) e o mofo branco, causado por Sclerotinia sclerotiorum e S.
minor.

O mofo branco, também
conhecido como podridão de Sclerotinia, é muito comum em cultivos de
alface conduzidos em ambientes frios e úmidos. A doença provoca grandes perdas
em áreas de produção muito cultivadas e não sujeitas à rotação com espécies não
hospedeiras de S. sclerotiorum e S. minor. Esses fungos atacam a
alface em qualquer estádio de desenvolvimento das plantas, mas mais
frequentemente em plantas próximas à época da colheita, quando a
"saia" das plantas mantêm uma condição de elevada umidade.

As plantas de alface
afetadas pelo mofo branco apresentam sintomas parecidos com os da queima da
saia, mas a evolução da doença é mais rápida, devido à colonização da região
basal das plantas pelos fungos, levando ao apodrecimento do caule e da base das
folhas. As folhas mais velhas, devido ao contato com o solo, são as primeiras
afetadas, murchando e apresentando sintomas de podridão mole. A doença avança
para as folhas internas, resultando na murcha de toda a planta, que pode se
tornar amarelecida antes de apodrecer totalmente. Na superfície do tecido
apodrecido, constata-se um crescimento de aspecto cotonoso de micélio branco
com a presença de escleródios, que são estruturas de sobrevivência dos fungos.
Os escleródios apresentam coloração branca inicialmente, evoluindo para preta
com o progresso da doença. Os sintomas da doença causados tanto por S.
sclerotiorum como S. minor são semelhantes.

O primeiro relato de S.
sclerotiorum foi observado em 1861, em plantas de girassol, sendo o fungo
capaz de infectar mais de 400 espécies de plantas, como alfafa, algodão,
batata, berinjela, canola, cenoura, ervilha, feijão, lentilha, morango,
mostarda, pimentão, repolho, soja e tomate.

O mofo branco é
favorecido por períodos úmidos e temperaturas que variam de 10ºC a 20°C. A
doença pode afetar cultivos de alface em regiões de clima temperado e
subtropical, ou ainda em regiões tropicais de elevada altitude, desde a fase
inicial de desenvolvimento da planta. Em regiões de clima seco, podem ocorrer
epidemias da doença, principalmente devido ao uso de sementes infectadas e/ou
infestadas pelos fungos, uso de irrigação em excesso, cultivos sucessivos com
alface e rotação/sucessão com hospedeiros naturais dos fungos. 

Os escleródios
produzidos por S. sclerotiorum e S. minor são compostos por uma
massa de hifas de consistência firme, responsáveis pela sobrevivência dos
fungos nos campos de cultivo de alface. A camada externa dos escleródios é
composta por células com melanina nas paredes, conferindo proteção aos fungos
contra condições ambientais adversas. Desta forma, esses patógenos podem
sobreviver por períodos de oito anos a dez anos nos campos de cultivo. Os
escleródios produzidos por S. minor são menores que os produzidos por S.
sclerotiorum, com formato irregular (0,5mm de diâmetro a 2mm de diâmetro) que
se assemelham a grãos de pólvora. Já os escleródios produzidos por S.
sclerotiorum apresentam diâmetro variando entre 10mm e 20mm.

O ideal é sempre evitar
a entrada/disseminação dos fungos nas áreas de cultivo. Para isso é necessário
conhecer o histórico de ocorrência de doenças da área, evitando as que já
tenham os fungos presentes, além de áreas de baixadas, sujeitas ao maior
acúmulo de umidade. Sempre optar pelo uso de sementes ou mudas sadias e
certificadas, e desinfestar os implementos utilizados.

As irrigações também
devem ser adequadamente manejadas, evitando-as em períodos mais críticos e
favoráveis ao mofo branco. O uso de cobertura (mulching) irá evitar que
as plantas tenham contato com o solo e, consequentemente, com estruturas do
patógeno.

Até o momento, não
existem cultivares de alface resistentes ao mofo branco, mas o produtor pode
adotar cultivares mais eretas, como as do grupo Romana, que permitem um menor
acúmulo de umidade entre as plantas, em comparação com as cultivares
“repolhudas”. Todas estas práticas irão desfavorecer o desenvolvimento da
doença.

Por serem fungos polífagos
que sobrevivem em várias espécies de plantas, recomenda-se a eliminação de
restos culturais que possam atuar como fontes de inóculo, além de plantas
daninhas como amendoim bravo (Euphorbia heterophylla), caruru (Amaranthus
deflexus), corda de viola (Ipomoea nil), guanxuma (Sida
rhombifolia), picão preto (Bidens pilosa) e maria mole (Senecio
brasiliensis).

A rotação com culturas
não hospedeiras é recomendada por períodos de três a quatro anos, mas, como os
fungos afetam diversas culturas, as opções são limitadas, restringindo-se
basicamente às gramíneas (aveia, milho, sorgo e trigo). Quando for possível, a
solarização do solo com polietileno transparente também é uma excelente
alternativa para reduzir a população desse fungo. Essa prática deve ser empregada
por no mínimo 60 dias, durante o verão.

A ocorrência de mofo
branco também vem sendo observada em cultivos hidropônicos, sendo necessária a
limpeza e higienização do sistema, com soluções à base de cloro.

São 16 produtos
registrados junto ao Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento (Mapa)
para controle do mofo branco em alface, abrangendo sete ingredientes ativos:
boscalida, ciprodinil, fluazinam, fludioxonil, iprodiona, isofetamida e
procimidona.

Os fungicidas
sistêmicos (boscalida e procimidona) podem ser aplicados preventivamente, se
necessário, e por no máximo três vezes, com intervalos de dez dias entre as
aplicações. A ocorrência de chuvas afeta o desempenho dos produtos, não podendo
ser aplicados após a ocorrência de chuvas ou em condições de orvalho.
Fungicidas de contato (fluazinam, iprodiona e isofetamida) são aplicados de
modo preventivo, entre sete dias e 14 dias após o transplante, respeitando-se o
limite máximo de três aplicações por ciclo com intervalos de sete dias.

Também estão
disponíveis produtos com dois ingredientes ativos (ciprodinil +
anilinopirimidina), que atuam de modo sistêmico e protetivo (contato),
garantindo um maior espectro de ação. Nesses casos, recomenda-se uma primeira
aplicação de modo preventivo, realizando-se no máximo duas aplicações por
ciclo.

As doses recomendadas
para cada produto encontram-se em suas respectivas bulas. Importante ressaltar
que o uso da maior dose é recomendado somente em áreas com histórico de
ocorrência da doença e condições climáticas favoráveis ao patógeno (alta
umidade, temperaturas amenas em torno de 20°C, dias nublados, sombreamento da
cultura e presença de orvalho).

O uso sucessivo de
fungicidas com um mesmo mecanismo de ação contribui para o surgimento de
populações resistentes, inviabilizando o emprego de tais produtos para o
controle do patógeno. Uma das práticas para se evitar problemas com resistência
aos fungicidas é alternar entre os mecanismos de ação, sempre seguindo as
recomendações da bula quanto à dose e ao modo de aplicação, e adotar as outras
práticas de manejo já citadas anteriormente.

Em solos altamente
infestados pelos fungos é recomendado o uso de micro-organismos antagonistas,
que devem ser aplicados preventivamente, e irão reduzir a produção de esporos e
a taxa de infecção nas plantas.

Fungicidas
microbiológicos à base dos fungos Trichoderma asperellum e T.
harzianum e das bactérias Bacillus amyloliquefaciens e B.
subtilis estão registrados para o controle do mofo branco em todas as
culturas. Quando se trata de biodefensivos, alguns cuidados devem ser tomados
no momento da aplicação, para não comprometer a eficiência do produto, por
exemplo, preparar a calda e aplicar no mesmo dia. Recomenda-se também aplicar
nas horas mais frescas, de modo que os conídios (esporos) não fiquem expostos à
radiação UV do sol, e se mantenham viáveis, no caso dos fungicidas à base de
fungos.

O mofo branco é uma
doença de grande importância econômica em alface e seu controle é dificultado
devido à ampla gama de hospedeiros e às estruturas de resistência dos fungos,
que sobrevivem por anos no solo. O manejo deve integrar todas as estratégias de
controle, como rotação de culturas, uso de produtos químicos e, principalmente,
controle biológico. Essa última ferramenta vem apresentando resultados
promissores e já está disponível no mercado.

Capaz de sobreviver na estrutura do solo por longos anos, o mofo branco (Sclerotinia sclerotiorum e S. minor) tem hospedeiros múltiplos que se somam às dificuldades de controle. Em alface o fungo pode inviabilizar a produtividade e levar ao completo apodrecimento das plantas. Seu manejo deve integrar medidas como rotação de culturas e uso de produtos químicos e biológicos.

A alface (Lactuca sativa L.) é a hortaliça folhosa mais consumida no Brasil e no mundo, e seu cultivo está sujeito à ocorrência de diversas doenças, que podem comprometer a sua produtividade. Dentre as doenças causadas por fungos que afetam a cultura destacam-se a septoriose (Septoria lactucae), o míldio (Bremia lactucae), a queima da saia (Rhizoctonia solani), a mancha de Cercospora (Cercospora longissima) e o mofo branco, causado por Sclerotinia sclerotiorum e S. minor.

Mofo branco em alface

Inovação em batata não
ocorre da noite para o dia, ou mesmo em uma safra. O desenvolvimento de uma
nova cultivar toma um longo tempo de trabalho de ciência e arte. Centenas de
cruzamentos são efetuados, milhares de genótipos gerados, avaliados e selecionados,
e dezenas de clones testados. Os melhores são validados em colaboração com a
cadeia, junto ao setor produtivo, à indústria e ao mercado. Submetidos a esse
processo, eventualmente um dos clones selecionados apresenta características
para se tornar uma nova cultivar. 

Seguindo esse processo, foi desenvolvida a cultivar BRS
F183 – Potira, em um tempo de 12 anos. O cruzamento que a originou foi
realizado em 2006, entre a cultivar BRS Ana e o clone C2372-02-02, clone esse
que havia sido selecionado de uma população de sementes botânicas introduzidas
do Centro Internacional de la Papa, Peru. Doze anos foi o tempo para ser
desenvolvida. “Potira” é palavra indígena, que significa flor, e brasileira,
como exatamente é esta cultivar.

No processo de seleção da cultivar, os principais aspectos
observados foram, entre outros, aparência atrativa, formato alongado, alta
produtividade, baixa suscetibilidade a doenças e boa qualidade de fritura.

Os requisitos de batata para processamento de palitos
pré-fritos são tubérculos de formato alongado e de tamanho grande, com alto
conteúdo de matéria seca e baixo teor de açúcares redutores (glicose e
frutose). Tubérculos alongados e graúdos são necessários para produzir palitos
fritos longos. O alto conteúdo de matéria seca (20%-24%) é essencial, pois a
água do tubérculo é substituída por gordura durante o processo de fritura.
Cultivares com baixo conteúdo de matéria seca absorvem mais gordura, o que
resulta em batatas fritas gordurosas e encharcadas, ao passo que aquelas com
alto conteúdo produzem palitos fritos com textura crocante e seca, e rendimento
industrial mais elevado. Já o baixo teor de açúcares redutores é crítico, uma
vez que reagem com os aminoácidos do tubérculo, produzindo compostos de cor
escura, resultando em indesejáveis palitos fritos escuros. BRS F183 - Potira
apresenta exatamente os principais fatores que garantem qualidade às batatas
para processamento de palitos fritos congelados de boa qualidade, isto é, cor
clara e textura crocante do produto final, que são importantes para aceitação
pelo consumidor. Também a coloração amarelo-claro da polpa atende à preferência
dos consumidores brasileiros.

Quanto aos requisitos de batata para o mercado fresco, a
aparência atrativa dos tubérculos é o mais destacado. A qualidade de uso, que
deveria ser o requisito mais importante para o consumidor, é raramente
observada nas cultivares predominantes no mercado brasileiro, ou seja,
versatilidade para multiuso culinário, incluindo a fritura. Para uso no
cozimento, o formato dos tubérculos não é requisito importante, pois cultivares
de qualquer formato de tubérculo podem ser usadas. Porém, a profundidade das
gemas deve ser preferencialmente rasa para facilitar o descascamento, com bom
aproveitamento da massa fresca. O conteúdo de matéria seca não é crítico para
este tipo de uso, mas cultivares com tendência de desagregarem-se no cozimento
não são adequadas para elaboração de saladas. Para assar, o alto conteúdo de matéria
seca é geralmente um requisito para uma boa qualidade, mas tubérculos alongados
e graúdos são bastante aceitos para serem embalados. BRS F183 - Potira se
coloca muito bem em relação a esses quesitos. Os tubérculos são de aparência
atrativa, conferida por formato e tamanho uniformes, gemas rasas e película de
coloração vermelha intensa e textura lisa, que facilitam o descascamento com
excelente rendimento de massa fresca. Quando cozida, apresenta textura firme
(coesa e não farinhenta), não se desagregando; e para assar, apresenta o
formato e o tamanho de tubérculo e o elevado teor de matéria requeridos.

As principais características agronômicas incluem
produtividade, resistência a fatores bióticos e tolerância a estresses
abióticos. BRS F183 - Potira apresenta alto potencial produtivo de tubérculos,
que supera as 50 toneladas por hectare, com estabilidade de produção. As
plantas têm porte médio a grande, hábito de crescimento semiereto, ciclo
vegetativo longo e os tubérculos apresentam baixa suscetibilidade a desordens
fisiológicas e período de dormência médio.

Com relação a doenças, a cultivar é moderadamente
resistente à mancha de alternária (Alternaria sp.) e possui moderada
suscetibilidade à requeima (Phytophthora infestans), duas doenças
foliares muito importantes. Não é resistente ao vírus Y da batata – PVY.
Observações de campo indicaram consistentemente que as reações de
suscetibilidade/resistência da BRS F183 - Potira à podridão mole (bactérias
pectolíticas), à rizoctoniose/crosta preta (Rhizoctonia solani) e à
murcha bacteriana (Ralstonia solanacearum) não são diferentes das
principais cultivares plantadas no País. A suscetibilidade à sarna comum (Streptomyces
scabies) observada em alguns dos testes de validação sugere adoção de
algumas medidas de controle, tais como evitar o plantio em solos com risco da
doença e com pH acima de 5,5, utilizar sementes sadias e manejar a água de
irrigação para evitar períodos secos no início da tuberização.

No que tange à tolerância a estresse de calor, expresso por
níveis de incidência das desordens fisiológicas – rachaduras, coração oco,
mancha ferruginosa, e embonecamento, BRS F183 – Potira, apresenta baixa
incidência. Em relação a déficit hídrico, observações de campo indicam nível de
tolerância interessante.

Comparada à cultivar Asterix, que predomina no mercado
brasileiro, BRS F183 - Potira apresenta maior conteúdo de matéria seca (21%),
conferindo elevado rendimento industrial e excelente qualidade de fritura;
produtividade de tubérculos comerciais similar ou até 25% maior e menor
incidência de desordem fisiológica do embonecamento e afilamento dos
tubérculos, determinantes para o êxito do setor produtivo; cor da película mais
atrativa (vermelho mais intenso), gerando maior apelo de compra aos
consumidores; e esverdeamento mais lento dos tubérculos, que contribui para uma
vida mais longa de pós-colheita, importante para a comercialização e ao
consumidor. Além disso, a cultivar apresenta maior rusticidade no manejo de cultivo
das plantas, conferida principalmente por maior resistência às principais
doenças foliares (alternária e requeima) e tolerância a estresses abióticos.

BRS F183 - Potira é indicada para cultivo nas regiões Sul,
Sudeste e Centro-Oeste do País. É mais adaptada à safra de inverno (plantios de
maio a julho) dos estados de Minas Gerais e São Paulo e às safras de outono
(plantios de fevereiro a março) e primavera (plantios de agosto a setembro) do
Rio Grande do Sul, Santa Catarina e Paraná. Também é adaptada à safra de verão
nas regiões de maior altitude do Sul do País.

O desenvolvimento da BRS F183 - Potira está alinhado às
demandas prioritárias da cadeia brasileira da batata, que incluem cultivares
para processamento industrial de palitos pré-fritos congelados e cultivares de
multiuso culinário, com a vantagem de ser a BRS F183 - Potira uma cultivar para
estes dois mercados.

Essa cultivar brasileira, com características para
fabricação de palitos pré-fritos congelados, apresenta-se como uma inovação
importante para contribuir para o crescimento da indústria brasileira e redução
da dependência de importações, com geração de oportunidades de emprego e de
renda no País. E, simultaneamente, como inovação em cultivar com
características para multiuso culinário para melhor satisfação não somente do
setor produtivo, mas também dos consumidores. Também com outros potenciais
impactos positivos na autonomia do País em cultivar de batata, com redução da
dependência de importação sementes, e no setor sementeiro brasileiro, com
geração de emprego e renda.

BRS F183 - Potira é resultado do Programa de Melhoramento
Genético de Batata da Embrapa, envolvendo trabalhos de pesquisa e
experimentação na Embrapa Clima Temperado, Pelotas, Rio Grande do Sul, e na sua
Estação Experimental de Canoinhas, Santa Catarina, e na Embrapa Hortaliças,
Brasília, Distrito Federal.

Interessados em se
tornar licenciados para produção e comercialização de sementes da BRS F183 -
Potira devem acessar a página de Licenciamento de Tecnologias no Portal
Embrapa. O licenciamento é concedido a produtores inscritos no Registro Nacional
de Sementes e Mudas (Renasem) como produtor de batata semente. Mais informações
na Estação Experimental Canoinhas pelos telefones (47) 3624-0127, (47)
3624-0195 e (47) 3624-2077 ou pelo e-mail cpact.eecan@embrapa.br.

Depois de 12 anos de pesquisas chega ao mercado a cultivar BRS F183 – Potira, uma inovação em batata de película vermelha para processamento e mercado fresco, com ótima aptidão culinária para fritura e cozimento.

Inovação em batata não ocorre da noite para o dia, ou mesmo em uma safra. O desenvolvimento de uma nova cultivar toma um longo tempo de trabalho de ciência e arte. Centenas de cruzamentos são efetuados, milhares de genótipos gerados, avaliados e selecionados, e dezenas de clones testados. Os melhores são validados em colaboração com a cadeia, junto ao setor produtivo, à indústria e ao mercado. Submetidos a esse processo, eventualmente um dos clones selecionados apresenta características para se tornar uma nova cultivar. 

Nova Cultivar de batata

Os sucessivos aumentos
da incidência de Greening no cinturão citrícola de São Paulo e
Triângulo/Sudoeste Mineiro nos últimos cinco anos têm causas relacionadas ao
clima mais favorável para reprodução e dispersão do inseto-vetor, o psilídeo Diaphorina
citri, mas, principalmente, associadas ao rigor de controle da doença
adotado pelos citricultores dentro e fora dos pomares. A seguir, são comentadas
as principais ações tomadas pelos produtores que têm comprometido a eficácia do
controle do Greening.

Não monitorar o psilídeo e as brotações

&nbsp;O monitoramento informa a presença de brotos
nas plantas e quanto, onde e quando o psilídeo está chegando para determinar os
momentos e locais em que as aplicações de inseticidas deverão ser mais
frequentes e direcionar as ações externas de controle. Sem o monitoramento o
citricultor não sabe se está aplicando no momento certo ou deixando de aplicar
quando deveria. 

Mesmo que aplique
baseado em calendário, o monitoramento servirá para indicar momentos em que os
intervalos de aplicação devam ser menores ou maiores. Esses intervalos devem
ser de no máximo sete dias quando existirem brotações com folhas não totalmente
expandidas. O principal pico de brotação nos pomares em produção surge logo
após as primeiras chuvas no final da estação seca e outros dois picos de menor
intensidade entre novembro e março. Por causa de alterações climáticas ou
práticas culturais (poda e irrigação), surtos de brotações e psilídeos podem
ocorrer também fora dessas épocas de pico.

&nbsp;O produtor deve observar com frequência
algumas plantas para verificar quando e quanto de brotação irá surgir (gemas
inchadas nas extremidades dos ramos). Em plantas mais jovens em formação, o
cuidado deve ser maior porque brotam quase que o ano todo. Para monitorar o
psilídeo, as armadilhas adesivas amarelas deverão ser colocadas ao redor de
toda periferia da propriedade, a cada 150m, no terço superior e externamente na
copa, próximas às brotações, das plantas da borda dos talhões. A redução do
número ou do tamanho das armadilhas e o uso de apenas um lado reduzem a captura
de psilídeos e a acurácia da informação. As avaliações dos psilídeos nos
brotos, para verificar a presença de ninfas de 4º e 5º instares, é importante
para avaliar se ainda há residual de inseticida nos brotos e se as aplicações
estão sendo feitas corretamente e no intervalo adequado para não permitir o
desenvolvimento do psilídeo nas plantas.

Confusão sobre a eficiência de inseticidas

Outro erro consiste em
considerar que todos os inseticidas do mesmo grupo químico apresentam a mesma
eficiência e período de controle. Dentro de cada grupo químico existem produtos
com diferentes eficiências e períodos de controle. A escolha de inseticidas
deve ser baseada na eficiência e no período de controle e não somente no preço.

Não aplicar inseticidas sistêmicos em pomares em formação

A aplicação de
inseticidas sistêmicos via drench ou no tronco associada com aplicações
foliares de inseticidas de contato reduz a incidência da doença em 50%
comparada com somente aplicações foliares. Portanto, o uso de inseticidas sistêmicos
é muito importante para evitar que as plantas jovens sejam infectadas antes de
entrarem em produção. Se as plantas forem infectadas ainda jovens, não
atingirão seu potencial produtivo. Ao contrário dos inseticidas pulverizados
sobre a copa das plantas, que rapidamente perdem sua eficiência de controle com
o crescimento dos brotos, os inseticidas sistêmicos via drench ou no tronco
atingem os novos tecidos formados durante o desenvolvimento do broto,
protegendo-o por 30 dias a 60 dias. Recomendam-se de três a quatro aplicações
de inseticidas sistêmicos nos pomares jovens, sendo a primeira aplicação na
fase de inchamento das gemas (início das primeiras chuvas), a segunda 45 dias
após, e a terceira e quarta aplicações durante os picos de brotação no verão.
Os inseticidas chamados de sistêmicos somente apresentam sistemicidade na
planta quando aplicados via drench ou no tronco. Quando pulverizados sobre as
folhas e brotações apresentam muito baixa ação sistêmica e o período de
controle deles é semelhante ao dos outros grupos químicos de inseticidas de
contato.

Outro equívoco reside
em utilizar intervalo de aplicação de inseticidas de contato acima de sete dias
no período de brotação. A brotação é o principal local para alimentação e
reprodução do psilídeo e deve estar protegida o tempo todo para evitar a
transmissão da bactéria do Greening. Os inseticidas de maneira geral têm
período de controle menor que 14 dias. No período de brotação, o rápido
crescimento do broto deixa os tecidos novos sem proteção inseticida. Além
disso, o período de brotação coincide com o período de chuva que, se acima de
10mm, pode lavar o inseticida aplicado, resultando na exposição do broto ao
psilídeo e necessidade de reaplicação.

Outra desatenção
consiste em não pulverizar plantas com brotação fora de época após poda ou
irrigação com o mesmo rigor da época de brotação mais frequente. A brotação é o
principal local para alimentação e reprodução do psilídeo e deve estar protegida
o tempo todo para evitar a transmissão da bactéria, independentemente da época
em que aparece.

Negligenciar o controle do psilídeo em pomares adultos

Os pomares novos devem
ter uma maior frequência na aplicação de inseticidas, pois as plantas vegetam
com maior frequência e a infecção reduz muito sua longevidade produtiva.
Entretanto, os pomares adultos em produção não devem ter o controle do psilídeo
negligenciado, pois plantas adultas infectadas perdem mais da metade da sua
capacidade produtiva em apenas quatro anos após o aparecimento dos sintomas da
doença.

Mais uma falha consiste
em aplicar inseticidas em intervalo acima de 14 dias em talhões onde não são
erradicadas as plantas doentes. Plantas doentes são fontes permanentes da
bactéria do Greening. Para que não sirvam de fonte de inóculo para
contaminação de outras plantas dentro do pomar e pomares vizinhos é necessário
evitar que o psilídeo se desenvolva no broto da planta ou que o psilídeo
adulto, que porventura adquiriu a bactéria nesta planta, não se torne apto para
transmiti-la. O ciclo de ovo a adulto do psilídeo varia de 14 dias a 21 dias e
o período latente da bactéria no psilídeo é em média de 17 dias. Portanto, para
que a planta doente não se torne uma fonte de inóculo é preciso que o controle
do psilídeo seja feito em intervalos iguais ou menores que 14 dias.

Não verificar se as
pulverizações estão sendo realizadas no intervalo recomendado. É muito comum o
atraso das aplicações, principalmente no período de brotação e chuvoso, quando
devem ser realizadas em intervalos menores e quando também são necessárias
pulverizações para controlar outras doenças e pragas. Atrasos no controle do
psilídeo, principalmente no período de brotação, possibilitam maiores períodos
de exposição dos brotos aos psilídeos e transmissão da bactéria.

A redução na dose dos
inseticidas abaixo da recomendação resulta em menor eficiência e período de
controle do psilídeo. Além disso, pode favorecer a seleção de populações
resistentes do psilídeo ao inseticida.

Aplicar inseticidas do mesmo modo de ação sucessivamente

A não rotação de
produtos de diferentes modos de ação, com excessivo uso de piretroides, leva à
seleção de populações do psilídeo resistentes ao inseticida/grupo químico
aplicado, causando a redução da eficiência de controle do produto ao longo do
tempo.

Pensar que produtos
biológicos e naturais apresentam efeito residual contra o psilídeo. Fungos
entomopatogênicos e extratos de plantas possuem efeito de choque e muito pouco
efeito residual de controle do psilídeo. Se o psilídeo infectivo chegar algumas
horas ou um dia após a aplicação, conseguirá se alimentar e transmitir a
bactéria.

Liberar Tamarixia radiata dentro dos pomares comerciais

Isso não deve ser
feito. Primeiro porque este parasitoide é sensível aos inseticidas utilizados,
o que não permite seu estabelecimento nos pomares comerciais. Segundo porque o
parasitismo não passa de 80%. Terceiro, porque a vespinha parasita apenas as
ninfas do psilídeo e não os adultos, não impedindo que o adulto contaminado
transmita a bactéria. Se já houver ninfas no pomar significa que uma fêmea
adulta do psilídeo teve oportunidade de pôr seus ovos e se alimentar na planta,
e transmitir a bactéria. Portanto, a liberação de Tamarixia deve ser
feita apenas em pomares abandonados e em plantas de quintais sem controle
químico com o objetivo de baixar a população do psilídeo criado nessas fontes
primárias de inóculo.

Não realizar a
manutenção periódica dos equipamentos de pulverização. A manutenção dos
equipamentos de pulverização é essencial para garantir a qualidade de
pulverização. Atenção especial deve ser dada para o desgaste das pontas de
pulverização, porque, além de aplicar um volume de calda acima do esperado,
torna as gotas mais grossas e desuniformes, prejudicando a cobertura e a
penetração de gotas em áreas mais difíceis de serem atingidas.

Não checar
periodicamente a qualidade da pulverização de inseticidas. Para um controle
eficaz do psilídeo, a cobertura da pulverização deve ser igual ou maior que 30%
em papéis hidrossensíveis colocados em toda parte externa da copa,
principalmente no terço superior, onde as pulverizações são mais erráticas e
onde ocorrem mais brotações. Problemas de pulverização têm sido observados em
pomares de até dois anos quando o pulverizador fica muito distante das plantas
e em pomares com plantas acima de 5m de altura.

Regulagem inadequada do volume
de calda para&nbsp;o tamanho das plantas

O volume de calda é
calculado em função do tamanho das plantas. Assim, é preciso que as medidas de
tamanho das plantas sejam tomadas regularmente, porque as plantas crescem muito
e o volume de calda anteriormente calculado não será mais suficiente para o
controle do psilídeo.

Aumentar a velocidade
de aplicação sem adequar o equipamento para aplicar o volume de calda adequado
e de maneira uniforme. Quando se altera a velocidade de trabalho, deve-se
também ajustar também a pressão e a vazão das pontas, para que o volume de
calda aplicado não seja alterado. Um simples aumento da velocidade de
deslocamento pode reduzir significativamente o volume de aplicação e resultar
numa eficácia de controle do psilídeo menor.

Usar volume de 25ml/m³
de copa em intervalos de aplicação maiores que sete dias. Aplicações de
inseticidas no volume de 25ml/m³ de copa possibilitam um período de controle de
até sete dias. Para intervalo de aplicação maior ou no período de chuva é
recomendado o volume de 40ml/m³ de copa.

Aumentar o volume de
calda para reduzir a frequência de aplicação. É um equívoco aumentar o volume
de calda acima de 40ml/m³ durante o período de brotação, acreditando que isso
ampliará o período de controle. Como os brotos crescem todos os dias, criando
novos tecidos não cobertos pela aplicação, e os inseticidas aplicados via pulverização
foliar não têm ação sistêmica, é eficaz aumentar a frequência de aplicação para
cobrir os novos tecidos formados que aumentar o volume de calda ou a dose do
inseticida.

Substituir as
pulverizações terrestres por pulverizações aéreas. A pulverização aérea
pulveriza uma área maior em menor tempo que a terrestre. Porém, em função da
pulverização aérea ser de baixo volume de aplicação, sofrer forte influência do
clima, ter maior dificuldade de atingir todas as partes da planta e ter baixo
residual, a pulverização terrestre é a melhor opção para o controle do
psilídeo. Assim, a pulverização aérea deve ser considerada como complementar
para o controle rápido e momentâneo de altas populações de psilídeos.

Não ajustar o rigor de
controle de acordo com a pressão de inóculo e psilídeo da região. Em regiões
onde há menor pressão de psilídeos e plantas doentes ao redor da propriedade, o
controle do psilídeo em intervalos maiores pode ser suficiente para manter a
incidência anual de plantas doentes em níveis aceitáveis (≤2%). Entretanto,
devido à dificuldade de controle das infecções primárias (infecções causadas
por psilídeos infectivos vindos de fora da propriedade), à medida que a pressão
externa aumenta na região, as medidas empregadas anteriormente têm menor
eficiência de controle e por isso deve-se aumentar o rigor nas medidas
aplicadas dentro e fora da propriedade.

Plantar pomares em
regiões com alta incidência e sem grupos de manejo regional do Greening ou
ao lado de pomares/talhões onde não se realiza o manejo adequado. A infecção
primária não é completamente evitada mesmo com aplicações frequentes de
inseticidas pelos seguintes motivos: dificuldade de cobertura dos brotos com
pulverização, rápido crescimento dos brotos, baixo período de controle dos
inseticidas de contato, não movimentação sistêmica do inseticida no broto
quando aplicado via foliar, chuvas durante o período de brotação que lavam os
inseticidas aplicados. Assim, quanto maior for a pressão de inóculo externa,
menores as chances de se conseguir um pomar saudável e economicamente longevo.
Nessa situação, medidas de ação externas de controle do Greening são
imprescindíveis.

Não realizar as ações
de manejo externo para redução de inóculo do Greening ao redor da
propriedade. O bom controle da doença dentro da propriedade é fundamental.
Entretanto, devido às características de dispersão dos psilídeos a longas
distâncias, nenhuma propriedade está isolada de outra propriedade comercial ou
não comercial com plantas de citros e haverá sempre uma pressão externa de
psilídeos infectivos sobre a propriedade, causando infecções primárias que são
difíceis de controlar completamente. Assim, quanto maior for a quantidade
plantas de citros doentes e sem controle do vetor ao redor da propriedade,
maior será a quantidade de infecções primárias e menor o sucesso de controle da
doença.

O controle do Greening
depende muito das ações de controle realizadas por todos os produtores
vizinhos de uma região. Um pomar sem controle adequado do Greening
prejudica todos os outros pomares da região. As parcerias entre citricultores
vizinhos, estabelecendo padrões rigorosos de controle, permitem o controle
sincronizado do psilídeo nas propriedades, assim como a eliminação de focos de
multiplicação e contaminação de psilídeos de fora da propriedade. A parceria
entre produtores aumenta a eficiência e reduz os custos dessas ações externas
de redução de inóculo em pomares abandonados, mal manejados e quintais,
essenciais para o sucesso do controle na região.

Não realizar a inspeção
periódica de plantas com sintomas de Greening. A inspeção para detecção
de plantas doentes é importante para a eliminação das fontes de inóculo dentro
da propriedade, para a avaliação do sucesso das medidas de controle adotadas,
para direcionar a adoção de medidas de controle mais rigorosas nos locais com
maiores incidências e de maiores riscos de infecção, e para a estimativa da
longevidade produtiva dos talhões. Sem estas informações o citricultor não
consegue tomar decisão. Recomendam-se pelo menos quatro inspeções anuais,
direcionadas entre os meses de fevereiro e setembro, que é o período de maior
expressão dos sintomas da doença.

Não eliminar as plantas
doentes em talhões novos (zero a seis anos). Quanto mais jovem for a planta
infectada, mais rápido é o progresso dos sintomas da doença por toda a copa da
planta e maiores são as perdas em produção. Plantas jovens com sintomas da
doença nunca atingirão o seu potencial produtivo e a longevidade econômica do
pomar será bastante reduzida. Além de não produzirem adequadamente, as plantas
doentes no pomar são permanentes fontes da bactéria caso o psilídeo consiga se
alimentar ou se reproduzir e desenvolver nelas.

Não eliminar as plantas
doentes em talhões com baixa incidência anual da doença (&lt;2%). As plantas
doentes no pomar são permanentes fontes da bactéria. Mesmo em talhões com
plantas adultas e baixa incidência anual da doença, é economicamente viável
eliminar as plantas doentes. Além disso, garante-se a manutenção da boa
qualidade das frutas produzidas.

Não aplicar inseticida nas plantas doentes antes de erradicar

A operação de
eliminação de plantas doentes faz com que os psilídeos presentes nestas plantas
se dispersem para outros talhões vizinhos e em grande quantidade, sendo
responsáveis por grande quantidade de infecções. Portanto, recomenda-se que
antes de erradicar um talhão ou planta doente, se pulverize com um inseticida
de contato.

Não aplicar herbicida
no toco ou não retirar as raízes após o arranquio da planta doente e também não
fazer o repasse para eliminar eventuais brotos das raízes. Nas plantas doentes,
a bactéria já está nas raízes. Ao cortar ou arrancar uma planta doente, as
raízes que não forem mortas ou retiradas poderão emitir brotações que já terão
a bactéria que poderá ser adquirida pelos psilídeos.

Utilizar “produtos” que
prometem curar ou aumentar a produção de plantas doentes em detrimento do
controle do psilídeo. Diversos produtos têm sido oferecidos ao citricultor,
cuja eficácia em curar ou aumentar a produção da planta doente ainda não foi
devidamente comprovada. O uso desses produtos que não curam a planta aumenta o
custo de produção, passando a competir com o controle do psilídeo, que acaba
sendo negligenciado. Manter plantas doentes no pomar sem o devido controle do
psilídeo, o que não é permitido por lei, aumenta a disseminação da doença
dentro da propriedade e por toda região ao redor.

Como medidas equivocadas podem comprometer a eficácia do controle do Greening e ajudam a explicar o aumento da doença nos cinturões citrícolas brasileiros ao longo dos últimos cinco anos.

Os sucessivos aumentos da incidência de Greening no cinturão citrícola de São Paulo e Triângulo/Sudoeste Mineiro nos últimos cinco anos têm causas relacionadas ao clima mais favorável para reprodução e dispersão do inseto-vetor, o psilídeo Diaphorina citri, mas, principalmente, associadas ao rigor de controle da doença adotado pelos citricultores dentro e fora dos pomares. A seguir, são comentadas as principais ações tomadas pelos produtores que têm comprometido a eficácia do controle do Greening.

Controle do greening em citros

Um dos principais
fatores que contribuem para a redução da produção e produtividade da cultura do
maracujazeiro é a ocorrência de pragas. Como se trata de uma planta que recebe
muitos visitantes, inclusive polinizadores, é muito importante o reconhecimento
das espécies pragas ou potencialmente causadoras de dano.

Nesse aspecto foi
oferecido recentemente um aplicativo para auxiliar produtor, técnicos e demais
interessados na identificação e no controle dessas pragas (Agropragas
Maracujá). Informações a este respeito podem ser obtidas no sítio da Embrapa
(<a href="https://www.embrapa.br/busca-de-solucoes-tecnologicas/-/produto-servico/6147/agropragas-maracuja---guia-de-identificacao-e-controle-de-pragas-do-maracujazeiro" target="_blank">https://www.embrapa.br/busca-de-solucoes-tecnologicas/-/produto-servico/6147/agropragas-maracuja---guia-de-identificacao-e-controle-de-pragas-do-maracujazeiro</a>),
na edição da revista Cultivar HF (n. 121, abril/maio 2020, p. 5 a 7) e em
outros veículos de comunicação. Entre essas pragas, um dos grupos mais
frequentes em maracujazeiros localizados nas diversas regiões produtoras é
representado por lagartas desfolhadoras.

Diversas são as espécies
de lagartas que ocorrem na cultura do maracujazeiro, porém, devido à severidade
dos danos e aos elevados prejuízos causados às plantas, destaca-se a espécie Dione
juno (Cramer) (Lepidoptera: Nymphalidae). Outra espécie, chamada de Dione
moneta Hübner (Lepidoptera: Nymphalidae), também pode ocorrer em
maracujazeiros, porém é registrada apenas em determinadas espécies da família
Passifloraceae, como em Passiflora adenopoda DC. e Passiflora
warmingii Masters. A espécie D. juno é a que tem ocorrência
generalizada em plantios de maracujazeiro.

Essa praga apresenta uma
metamorfose completa, também chamada de holometabolia, pois o inseto passa por
quatro estágios de desenvolvimento em sua vida: três estágios juvenis: (ovo,
larva, pupa) e o estágio adulto. No entanto, apenas a fase de larva é causadora
dos danos. As larvas, na Ordem Lepidoptera, podem ser chamadas de lagartas.

O adulto é o responsável
pela reprodução e início de novos ciclos de infestação. Na forma adulta, D.
juno é uma borboleta com asas alaranjadas e margens pretas na face dorsal.
Sua envergadura é em torno de 60mm (Figura 1). Os insetos são frequentemente
vistos voando ao redor das plantas nos horários mais quentes do dia.
Alimentam-se de néctar e de líquidos açucarados. Quando encontram um local
adequado para a oviposição, permanecem durante muito tempo colocando seus ovos.
Nessa atividade, ficam com as asas fechadas, mostrando um padrão diferenciado
na sua coloração. As fêmeas colocam os ovos geralmente próximos da borda das
folhas, na face inferior das folhas, em grupos de 70 ovos a 140 ovos por
postura (Figura 2).

Os ovos têm formato
alongado, medem aproximadamente 0,9mm de altura por 0,6mm de diâmetro e,
inicialmente, são amarelos (Figuras 3A e 3B). Com o desenvolvimento dos
embriões, os ovos tornam-se mais escuros, assumindo a coloração alaranjada
(Figura 3C) e, próximo da eclosão larval, assumem a coloração vermelho-escura.
O período de incubação, ou seja, o intervalo de tempo entre a colocação do ovo
e a eclosão da larva, é de seis a sete dias.

As larvas ou lagartas,
assim que eclodem, possuem corpo de coloração amarelada ou marrom-clara e medem
aproximadamente 5mm de comprimento por 1mm de largura (Figura 4A). Ao longo de
seu desenvolvimento, a coloração do corpo das lagartas torna-se marrom-escura
(Figura 4B) e, posteriormente, com manchas alaranjadas e brancas (Figura 4C).
No último instar, alcançam 29mm a 35mm de comprimento por 3mm a 5mm de largura
(Figura 4D). Durante praticamente todo o desenvolvimento, se mantêm em grupo.
Somente no final do desenvolvimento se separam (Figura 4D). Quando perturbadas,
elevam a cabeça e o tórax e esta pode ser considerada uma posição de defesa
contra inimigos naturais (Figuras 4E e 4F). A duração da fase larval é de 20
dias a 30 dias, sendo o desenvolvimento mais rápido quando as temperaturas são
mais altas, portanto, mais favoráveis à ocorrência de praga.

Conforme mencionado, a
fase larval é a que provoca danos às plantas. Inicialmente, quando as lagartas
são pequenas, os impactos são mínimos, pois apenas raspam as folhas e ramos e
destroem pequena área foliar (Figura 5). À medida que se desenvolvem, contudo,
consomem grandes áreas foliares, reduzindo a fotossíntese e atrasando o
desenvolvimento das plantas, com grandes prejuízos à produção. Em casos de
forte infestação, podem desfolhar completamente as plantas (Figura 6). Na
ausência de folhas, podem até se alimentar de caule/brotos e, inclusive, de
frutos (Figura 7). Ataques sucessivos da praga podem levar a planta à morte,
principalmente plantas jovens. Ocorrem cinco instares larvais. A cada instar,
parte do tegumento do inseto é perdida e um novo tegumento se forma para que a
lagarta possa aumentar de tamanho. Esse processo é chamado de ecdise ou muda. É
possível observar esses restos de tegumento aderidos a partes das plantas
(Figura 8).

Após a fase larval, os
insetos passam para o estágio de pupa (Figura 9). A pupa de D. juno apresenta
coloração clara com manchas em tons de marrom, bege e cinza (Figura 10) e mede
aproximadamente 20cm de comprimento. Normalmente, as lagartas empupam na
própria planta, aderidas às folhas (Figura 11A) ou hastes e caule (Figura 11B),
porém, podem usar diferentes substratos como local para a empupação, como o fio
de arame de condução da planta (Figura 11C) ou mourões e árvores presentes no
pomar (Figura 11D). A duração da fase pupal é de sete dias a 15 dias. Apesar de
permanecer fixa no substrato, a pupa é um estágio de intensa atividade
metabólica em que ocorre a transformação do estágio juvenil para o adulto. A
borboleta recém-emergida apresenta as asas atrofiadas. Assim, logo após sua
emergência, permanece imóvel, normalmente próxima do local onde emergiu, com as
asas para baixo, para que os fluidos corporais possam auxiliar a expansão das
asas (Figura 12).

De forma a evitar danos
econômicos, a detecção precoce da praga é fundamental para facilitar o
controle. Assim, recomenda-se o monitoramento da população da praga, com
amostragens quinzenais ou semanais nas épocas de maior incidência da praga. O
monitoramento é&nbsp; realizado por meio da
observação direta da porcentagem de desfolha. Para isso, o pomar deve ser
dividido em talhões homogêneos. Uma linha a cada 20 fileiras deve ser
selecionada ao acaso. As amostragens devem ser feitas ao longo dessa linha em
5m da linha a cada 20m de espaldeira. O nível de controle é de 30% de desfolha
das plantas no talhão.

Porém, nem sempre é
necessário efetuar o controle da praga, visto que há diversos organismos que
naturalmente reduzem as populações do inseto a níveis que não causam danos
econômicos. Alguns deles são Palmistichus elaeisis (Hymenoptera:
Eulophidae), vespinha que parasita pupas, e o vírus da poliedrose nuclear
(Nuclear Polyhedrosis Virus, NPV), que ataca as lagartas.

Em caso de alta
infestação e necessidade de controle, podem ser feitas a catação e a destruição
de ovos, lagartas e pupas e/ou remoção de partes da planta com ocorrência do
inseto. Esse método depende da oferta de mão de obra, mas é muito eficiente em
áreas pequenas. Essa operação obtém melhores resultados quando os alvos são os
ovos e as lagartas no início do desenvolvimento, pois, além de impedir que os
danos evoluam com o desenvolvimento da praga, ainda se beneficia do
comportamento gregário das lagartas.

Contudo, em áreas
extensas, outros métodos podem ser aplicados, como a utilização de inseticidas.
Existem diversos princípios ativos registrados para a cultura no Ministério da
Agricultura, Pecuária e Abastecimento (Mapa). Nesse caso, devem ser observadas
todas as instruções contidas na bula do produto, obedecendo-se à regulamentação
do Mapa. Todas as operações devem ser orientadas por um profissional
habilitado.

Entre os produtos
registrados para controle dessa praga, podem ser citados os inseticidas
microbiológicos à base de Bacillus thuringiensis, particularmente B.
thuringiensis var. kurstaki (Berliner), cepa HD-1 com 16.000
U.I./mg, equivalente a 30-52x106 esporos viáveis/mg. Esse produto atua por
ingestão, sendo que causa paralisia do canal digestivo das lagartas dentro de
uma a quatro horas após a ingestão. Dessa forma, ocorre a suspensão da
alimentação e, portanto, dos danos, embora as lagartas possam permanecer sobre
as plantas até cinco dias após a aplicação do inseticida. Para que haja melhor
efeito, as aplicações devem ser realizadas no início da infestação da praga
(lagartas pequenas).

Outros princípios ativos
também têm registro no Mapa para controle da praga. São eles: teflubenzurom,
cloridrato de cartape, clorfenapir, lambda-cialotrina, espinetoram, indoxacarbe
(Tabela 1). Com relação ao teflubenzuron, como ele se enquadra na categoria de
produto regulador de crescimento de insetos e ácaros, atuando no processo de
metamorfose, interferindo na ecdise ou muda dos insetos, recomenda-se que as
aplicações sejam realizadas quando a população da praga é formada,
principalmente, por lagartas jovens, em início de desenvolvimento. Ocorre a
suspensão da alimentação do inseto logo após a ingestão do produto, porém a
lagarta permanece nas plantas (sem causar danos) por até quatro dias após a
ingestão do inseticida.

Devido ao fato de que o maracujazeiro
requer polinização cruzada, efetuada por mamangavas, é muito importante que as
aplicações de inseticidas sejam realizadas em horários que não interfiram com a
atividade das mamangavas. Salienta-se, também, que o produtor deve dar
preferência à escolha de produtos seletivos para que seja mínima a
interferência com os inimigos naturais.

A produção
brasileira de maracujá é de 593.429 toneladas. A região Nordeste é a maior
produtora (382.739 toneladas), sendo que a Bahia responde por quase 30% da
produção brasileira, mas com um rendimento muito baixo (10,79t/ha). Os estados
com maior representatividade na produção de maracujá, além da Bahia, são Ceará
(145.102 toneladas), Santa Catarina (44.934 toneladas), Minas Gerais (33.765
toneladas) e São Paulo (30.809 toneladas) (IBGE, 2019). Apesar de os estados do
Ceará e Santa Catarina apresentarem rendimento superior a 20t/ha, a
produtividade brasileira média ainda é baixa (14,27t/ha).

Espécie Dione juno é a principal causadora de prejuízos à cultura do maracujazeiro. Monitorar a população dessa praga, com amostragens quinzenais ou até mesmo semanais, nas épocas de maior incidência, é fundamental para a adoção de medidas de controle quando necessário.

Um dos principais fatores que contribuem para a redução da produção e produtividade da cultura do maracujazeiro é a ocorrência de pragas. Como se trata de uma planta que recebe muitos visitantes, inclusive polinizadores, é muito importante o reconhecimento das espécies pragas ou potencialmente causadoras de dano.

Lagartas desfolhadoras em maracujá

A importância de contar com um trator bem dimensionado para atender às diversas operações que demanda a rotina diária de trabalho para a produção de frutas de mesa como caju, pitaia, lichia, figo da Índia e amora silvestre.&nbsp;

Para conhecer a aplicação do trator LS modelo R65 na fruticultura, fomos até o município de Artur Nogueira, no estado de São Paulo, mais especificamente no Sítio Cajueiro, do senhor Donizete Aparecido Leme. Ele é produtor de caju, pitaia e lichia, além de figo da Índia e amora silvestre.

Muito simpático e solícito, o senhor Donizete nos contou que nasceu no Paraná e veio para São Paulo na década de 1980, depois de uma breve passagem, em busca de trabalho, no estado de Mato Grosso. A motivação para a saída do seu estado natal foi a grande geada de 1993, que quase terminou com a produção de café no Paraná. Também serviu como motivação o surto de bicudo-do-algodoeiro, que atacou a lavoura de algodão lá pelos anos 1995-96, quase dizimando as lavouras paranaenses. Bem-humorado, disse em tom de brincadeira que foi “espantado” da sua terra natal. Na busca de oportunidades, começou no ano de 2002 a preparação para a produção de caju, colocando as mudas, orientado por um programa de melhorando e clonagem iniciado pela Embrapa na década de 1980. Atualmente mora no Sítio com a sua família de cinco pessoas, todas envolvidas na produção.

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